sábado, 29 de noviembre de 2014

Método de Kato (variación Katz), en 41.7 mg de heces


El método originalmente introducido por japoneses para hacer encuestas epidemiologicas de shistosomas. La  ORGANIZACIÓN MUNDIAL de la SALUD considerar es método como el de elección y el mas adecuado en encuestas, monitoreo y evaluación de programas de control de nematodos trasmitidos por el suelo y schistosomiasis.

Este método consiste en aclarar con glicerina un frote  grueso  de heces no diluidas. La variación Katz consiste en entregar una cantidad de heces, que depende del tamaño del templete utilizado, el tamaño del templete varia, podemos observar Huevos de taenia sp o  de hymenolepis nana  y se informa sin contar. 

Ventajas:


  • No se diluyen
  • Se Utiliza materiales baratos y accesibles
  • Se puede transportar una vez preparado en el campo
  • Puede guardarse varios meses para verificar resultados
  • Puede estandarizarse para encuestas regiones gráficas por investigadores
Desventajas:


  • Solo puede utilizar heces frescas no diarreicas, liquidas o mucoides
  • No se aplica para la detección de protozoos ni larvas de nematodos
  • Huevos frágiles como los de uncinaria y Hymenolepis nana se vuelven irreconocibles en pocas horas
  • No es indicado para heces que contengan mucha fibra y grasas
Preparación de Solución de  Glicerina Yagua:
Glicerina pura 100 mL
Agua destilada 100 mL
Verde de Malaquita al 3% 1 mL
(solución acuosa)
Mezclar bien en frasco grande

NOTA: Un templete de 9 mm x 1mm 50g de heces
temprete 6mm x 1.5 41mg de heces

Material:

PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN DE GLICERINA YAGUA
ESPÁTULAS DE PLÁSTICO
TEMPLETE
TELA METÁLICA
PAPEL ABSORBENTE
PAPEL PERIODICO
PINZAS
FRASCO CON DENSINFECTANTE
PORTA
MARCADOR
BAJA-LENGUAS 
CONTADOR MANUAL

Procedimiento:
  1. Extender el papel periódico
  2. Identificar Porta-Objetos con la muestra a examinar y colocar sobre este el templete de plástico
  3. Con el palo de paleta tomar una cantidad de heces y colocarla sobre una superficie plana 
  4. Colocar sobre estas heces un cuadro de tela metálica, plástica o nylon que hace las veces de colador
  5. Raspar la superficie de la tela con el espátula plástica tomando suficientes heces coladas para llenar el agujero del templete
  6. Remover el templete, descartar este y la tela y cubrir el redondel de heces  con un cuadro de celofán
  7. Invertir el porta-objetos con esta preparación sobre una hoja de papel absorbente 
  8. Darle vuelta y colocar sobre una superficie protegida de insectos, esperar de 30 a 45 min 
  9. observar de 10x huevos de ascaris, trichuris
  10. multiplicar el resultado por 24
Imágenes tomadas en el laboratorio 







TRABAJOS CITADOS:

Rina Girard de Kaminsky, M.Sc (2003) MANUAL DE PARASITOLOGIA, MÉTODOS PARA LABORATORIO DE ATENCIÓN PRIMARIA DE SALUD HONDURAS 2DA: 2DA EDICIÓN

IMÁGENES TOMADAS POR Mendez Rivera Mariela  

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